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當前位置:首頁技術文章伊氏錐蟲(TE)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)

伊氏錐蟲(TE)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)

更新時間:2022-04-21點擊次數(shù):1644

【產(chǎn)品名稱】

通用名稱:伊氏錐蟲(TE)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR )

NameDiagnostic Kit for Trypanosoma evansi DNA(PCR-Fluorescence Probing

【包裝規(guī)格】50T/

【預期用途】 本試劑盒適用于檢測腦海馬回部組織、全血等樣本中的伊氏錐蟲,用于伊氏錐蟲感染的輔助診斷,其檢測 結果僅供參考。 

【檢驗原理】 本試劑盒采用 TaqMan 探針法實時熒光 PCR 技術,設計一對伊氏錐蟲特異性引物,結合一條特異性探針, 用熒光 PCR 技術對伊氏錐蟲DNA 進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。

【試劑組成】

包裝規(guī)格50T/
TE 反應液500μL×2
酶液50μL×1
TE 陽性質(zhì)控品50μL ×1
陰性質(zhì)控品250μL ×1

說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用。

【儲存條件及有效期】 -20±5℃,避光保存、運輸、反復凍融次數(shù)不超過 5 次,有效期 12 個月。

【適用儀器】 ABI 、安捷倫 MX3000P/3005PLightCyclerBio-RadEppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

【標本采集】 病死或撲殺動物的腦海馬回部組織 2g;待檢活動物,抽取全血 5mL EDTA-2Na 抗凝管

【保存和運輸】 上述標本短期內(nèi)可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個月,標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸, 嚴禁反復凍融。

【使用方法】 1. 樣品處理(樣本處理區(qū))

1.1 樣本前處理 組織樣品:每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g,手術剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 100μL 1.5mL 滅菌離心管中;咽拭子樣品直接取 100μL 1.5mL 滅菌離心管中。

1.2 核酸提取 推薦采用優(yōu)利科(上海)生命科學有限公司生產(chǎn)的核酸提取或純化試劑(磁珠法或離心柱法)進行核酸提 取,請按照試劑說明書進行操作。

2. 試劑配制(試劑準備區(qū)) 根據(jù)待檢測樣本總數(shù),設所需要的 PCR 反應管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對照+1 管陽性對照;樣品每滿 10 份,多配制 1 ),每測試反應體系配制如下表:


試劑TE 反應液酶液
用量(樣本數(shù)為 N20μL1μL

將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中,21uL/管。

3. 加樣(樣本處理區(qū)) 將步驟 1 提取的核酸、陽性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 4μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻, 短暫離心。

4. PCR 擴增(核酸擴增區(qū))


4.1 將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內(nèi); 4.2 設置好通道、樣品信息,反應體系設置為 25μL; 熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter DyeFAM, 淬滅通道(Quencher DyeNONEABI 系列儀器請勿選擇 ROX 參比熒光,選擇 None 即可。


4.3 推薦循環(huán)參數(shù)設置:

步驟循環(huán)數(shù)溫度時間收集熒光信號
11 cycle9510min
240 cycles9415sec


5530sec


5. 結果分析判定

5.1 結果分析條件設定 設置 Baseline Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現(xiàn)整體傾斜時,根據(jù)分析后圖像 調(diào)節(jié) Baseline start (一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))stop (一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),以及 Threshold Value (上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結果。

5.2 結果判斷 陽性:檢測通道 Ct ≤35,且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線; 可疑:檢測通道 35<Ct ≤38,建議重復檢測,如果檢測通道仍為 35<Ct ≤38,且曲線有明顯的增長曲線, 判定為陽性,否則為陰性; 陰性:樣本檢測結果 Ct >38 或無 Ct 值。

6. 質(zhì)控標準 陰性質(zhì)控品:Ct>38 或無 Ct 值顯示; 陽性質(zhì)控品:擴增曲線有明顯指數(shù)生長期,且 Ct ≤32; 以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。

7. 檢測方法的局限性 1.樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質(zhì)量有關; 2.樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現(xiàn)假陽性結果; 3.陽性對照、擴增產(chǎn)物泄漏,會導致假陽性結果; 4.病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果; 5.不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果; 6.試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現(xiàn)假陰性或定量檢測不準確的結果; 7.本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

【注意事項】 1.所有操作嚴格按照說明書進行; 2.試劑盒內(nèi)各種組分使用前應自然融化,*混勻并短暫離心; 3.反應液應避光保存; 4.反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊; 5.使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專用工作服; 6.樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進行,以免交叉污染; 7.實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器; 8.試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫(yī)學實驗室生物安全通則》進行處理。


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