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轉基因大豆MON87705品系熒光PCR試劑盒

產品簡介

轉基因大豆MON87705品系熒光PCR試劑盒適用于檢測氣管分泌物拭子、肺組織等樣本中的轉基因大豆MON87705品系,用于轉基因大豆MON87705品系感染的輔助診斷,其檢測結果僅供參考。

產品型號:
更新時間:2025-06-17
廠商性質:生產廠家
訪問量:1135
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轉基因大豆MON87705品系熒光PCR試劑盒

【產品名稱】

通用名稱:轉基因大豆MON87705品系熒光PCR試劑盒

Name:Transgenic soybean MON87705 line fluorescent PCR kit

【包裝規格】50T/盒

【預期用途】

本試劑盒適用于檢測轉基因植物的 MON87705 基因,用于篩查待檢測植物中是否含有 MON87705 成分。其檢測結果僅供參考。

【檢驗原理】

本試劑盒用國家標準的 MON87705 特異性引物和探針,用熒光 PCR 技術進行轉基因成分的檢測。

【試劑組成】

名 稱

50T/盒

MON87705反應液

500μL×2 管

酶液

50μL×1 管

MON87705陽性質控品

50μL ×1 管

陰性質控品

250μL ×1 管

說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用。

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融次數不超過 5 次,有效期 12 個月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

【標本采集】

稱取 200g 樣品。

【保存和運輸】

上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個月,標本運送應采用 0℃冰壺。

【使用方法】

1.  樣品處理(樣本處理區)

1.1  樣本前處理

固體樣本:用粉碎機或冷凍研磨儀將樣品研磨至細粉狀。

1.2  DNA 提取

對于固體標本,DNA 的提取可以采用 SN/T 2584-2010 中推薦的方法:

1)  每個樣品取 2 個平行管。稱取 200mg 粉碎的樣品,加入 1mL 預冷至 4℃的抽提液,劇烈搖動混勻后,在冰上靜止 5min,4℃條件下 10000g 離心 15min,棄上清液;

2)  加入 600μL 預熱至 65℃的裂解液,充分重懸沉淀,在 65℃恒溫保持 40min,期間顛倒混勻 5 次;

3)  室溫條件下10000g 離心10min,取上清液轉移至新離心管中,加入5μLRNAseA, 37℃恒溫 30min,分別用等體積苯/酚:異戊醇溶液和三氯jia烷:異戊醇溶液各抽提一次;

4)  室溫條件下,10000g 離心 10min,取上清液至新離心管,加入三分之二體積的異丙醇,十分之一體積的 3mol/L 的乙酸鈉溶液(pH=6.5),-20℃放置 2-3h;

5)  在 4℃條件下,10000g 離心 15min,棄上清液,用 70%乙醇洗滌沉淀一次,倒出乙醇,晾干沉淀;

6)  加入 50μL TE(pH8.0)溶解沉淀,所得溶解即為樣品 DNA 溶液。也可使用等效的 DNA/提取試劑盒。

油脂樣本請直接選用市售油脂 DNA/提取試劑盒,按說明操作。

2.  試劑配制(試劑準備區)

根據待檢測樣本總數,設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照;樣品每滿 7 份,多配制 1 份),每測試反應體系配制如下表:

試劑

MON87705反應液

酶液

用量

20μL

1μL




3.  加樣(樣本處理區)

將步驟 1 提取的 DNA、陽性質控品、陰性質控品各取 4μL,加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。

4.  PCR 擴增(核酸擴增區)

4.1   將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內;

4.2   設置好通道、樣品信息,反應體系設置為 25μL;熒光通道選擇: 檢測通道

(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)選擇 NONE,請勿選擇ROX 參比熒光。

4.3   推薦循環參數設置:


步驟

循環數

溫度

時間

收集熒光信號

1

1 cycle

95℃

10min

2

40 cycles

94℃

15sec

55℃

30sec







5.結果分析判定

5.1  結果分析條件設定

設置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現整體傾斜時,根據分析后圖像調節 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內調節)、stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結果。

5.2  結果判斷

陽性:檢測通道 Ct 值≤35,且曲線有明顯的指數增長曲線;

可疑:檢測通道 35<Ct 值≤38,建議重復檢測,如果檢測通道仍為 35<Ct 值≤38,且曲線有明顯的增長曲線,判定為陽性,否則為陰性;

陰性:樣本檢測結果 Ct 值>38 或無 Ct 值。

6.  質控標準

陰性質控品:Ct>38 或無 Ct 值顯示;

陽性質控品:擴增曲線有明顯指數生長期,且 Ct 值≤32; 以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。

7.  檢測方法的局限性

樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關;

樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;

陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;

病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果;

不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;

試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果;

本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

【注意事項】

所有操作嚴格按照說明書進行;

試劑盒內各種組分使用前應自然融化,wan全混勻并短暫離心;

反應液應避光保存;

反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

使用一次性吸頭、一次性手套和各區專用工作服;

樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染;

實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;

試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。


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